GB／T 6432—94

　　本標準參照采用ISO 5983—1979 《動物飼料──氮含量的測定和粗蛋白含量計算》。

1 主題內容與適用范圍

　　本標準規定了飼料中粗蛋白含量的測定方法。

　　本標準適用于配合飼料、濃縮飼料和單一飼料。

2 引用標準

　　GB 601 化學試劑滴定分析（容量分析）用標準溶液的制備

3 原理

　　凱氏法測定試樣中的含氮量，即在催化劑作用下，用硫酸破壞有機物，使含氮物轉化成硫酸銨。加入強堿進行蒸餾使氨逸出，用硼酸吸收后，再用酸滴定，測出氮含量，將結果乘以換算系數6.25，計算出粗蛋白含量。

4 試劑

4.1 硫酸（GB 625）：化學純，含量為98％，無氮。

4.2 混合催化劑：0.4g硫酸銅，5個結晶水（GB 665），6g硫酸鉀（HG 3─920）或硫酸鈉（HG 3─908），均為化學純，磨碎混勻。

4.3 氫氧化鈉（GB 629）：化學純，40％水溶液（m／V）。

4.4 硼酸（GB 628）：化學純，2％水溶液（m／V）。

4.5 混合指示劑：甲基紅（HG 3─958）0.1％乙醇溶液，溴甲酚綠（HG 3─1220）0.5％乙醇溶液，兩溶液等體積混合，在陰涼處保存期為三個月。

4.6 鹽酸標準溶液：鄰苯二甲酸氫鉀法標定，按GB 601制備。

4.6.1 鹽酸標準溶液：c（HCl）＝0.1mol／L。8.3mL鹽酸（GB 622，分析純），注入 1000mL蒸餾水中。

4.6.2 鹽酸標準溶液：c（HCl）＝0.02mol／L。1.67mL鹽酸（GB 622，分析純），注入1000mL蒸餾水中。

4.7 蔗糖（HG 3─1001）：分析純。

4.8 硫酸銨（GB 1396）：分析純，干燥。

4.9 硼酸吸收液：1％硼酸水溶液1000mL，加入0.1％溴甲酚綠乙醇溶液10mL，0.1％甲基紅乙醇溶液7mL，
4％氫氧化鈉水溶液0.5mL，混合，置陰涼處保存期為一個月（全自動程序用）。

5 儀器設備

5.1 實驗室用樣品粉碎機或研缽。

5.2 分樣篩：孔徑0.45mm（40目）。

5.3 分析天平：感量0.0001g。

5.4 消煮爐或電爐。

5.5 滴定管：酸式，10、25mL。

5.6 凱氏燒瓶：250mL。

5.7 凱氏蒸餾裝置：常量直接蒸餾式或半微量水蒸氣蒸餾式。

5.8 錐形瓶：150、250mL。

5.9 容量瓶：100mL。

5.10 消煮管：250mL。

5.11 定氮儀：以凱氏原理制造的各類型半自動，全自動蛋白質測定儀。

6 試樣的選取和制備

　　選取具有代表性的試樣用四分法縮減至200g，粉碎后全部通過40目篩，裝于密封容器中，防止試樣成分的變化。

7 分析步驟

7.1 仲裁法

7.1.1 試樣的消煮

　　稱取試樣0.5～1g（含氮量5～80mg）準確至0.0002g，放入凱氏燒瓶（5.6）中，加入6.4g混合催化劑（4.2），與試樣混合均勻，再加入12mL硫酸（4.1）和2粒玻璃珠，將凱氏燒瓶（5.6）置于電爐（5.4）上加熱，開始小火，待樣品焦化，泡沫消失后，再加強火力（360～410℃）直至呈透明的藍綠色，然后再繼續加熱，至少2h。

7.1.2 氨的蒸餾（蒸餾步驟的檢驗見附錄A）

7.1.2.1 常量蒸餾法

　　將試樣消煮液（7.1.1）冷卻，加入60～100mL蒸餾水，搖勻，冷卻。將蒸餾裝置（5.7）的冷凝管末端浸入裝有25mL硼酸（4.4）吸收液和2滴混合指示劑（4.5）的錐形瓶內。然后小心地向凱氏燒瓶（5.6）中加入50mL氫氧化鈉溶液（4.3），輕輕搖動凱氏 燒瓶（5.6），使溶液混勻后再加熱蒸餾，直至流出液體積為100mL。降下錐形瓶，使冷凝管末端離開液面，繼續蒸餾1～2min，并用蒸餾水沖洗冷凝管末端，洗液均需流入錐形瓶內，然后停止蒸餾。

7.1.2.2 半微量蒸餾法

　　將試樣消煮液（7.1.1）冷卻，加入20mL蒸餾水，轉入100mL容量瓶中，冷卻后用水稀釋至刻度，搖勻，做為試樣分解液。將半微量蒸餾裝置（5.7） 的冷凝管末端浸入裝有20mL硼酸（4.4）吸收液和2滴混合指示劑（4.5）的錐形瓶（5.8）內。蒸汽發生器 （5.7）的水中應加入甲基紅指示劑數滴，硫酸數滴，在蒸餾過程中保持此液為橙紅色，否則需補加硫酸。準確移取試樣分解液10～20mL注入蒸餾裝置（5.7）的反應室中，用少量蒸餾水沖洗進樣入口，塞好入口玻璃塞，再加10mL氫氧化鈉溶液（4.3），小心提起 玻璃塞使之流入反應室，將玻璃塞塞好，且在入口處加水密封，防止漏氣。蒸餾4min降下錐形瓶（5.8）使冷凝管末端離開吸收液面，再蒸餾1min，用蒸餾水沖洗冷凝管末端，洗液均流入錐形瓶內，然后停止蒸餾。

　　注：7.1.2.1和7.1.2.2蒸餾法測定結果相近，可任選一種。

7.1.2.3 蒸餾步驟的檢驗

　　稱取0.2g硫酸銨（4.8），代替試樣，按7.1.2或7.2.2步驟進行操作，測得硫酸銨含氮量為21.19±0.2％，否則應檢查加堿、蒸餾和滴定各步驟是否正確。 

7.1.3 滴定

　　用7.1.2.1或7.1.2.2法蒸餾后的吸收液立即用0.1mol／L（ 4. 6. 1）或0 .02mol／L（4.6.2）鹽酸標

　　準溶液滴定，溶液由藍綠色變成灰紅色為終點。

7.2 推薦法

7.2.1 試樣的消煮

　　稱取0.5～1g試樣（含氮量5～80mg）準確至0.0002g，放入消化管中，加2片消化片（儀器自備）或
6.4g混合催化劑（4.2），12mL硫酸（4.1），于420℃下在消煮爐上 消化1h。取出放涼后加入30mL蒸餾水。

7.2.2 氨的蒸餾

　　采用全自動定氮儀（5.11）時，按儀器本身常量程序進行測定。

　　采用半自動定氮儀（5.11）時，將帶消化液的管子插在蒸餾裝置上，以25mL硼酸（4.4）為吸收液，加入2滴混合指示劑（4.5），蒸餾裝置（5.7）的冷凝管末端要浸入裝有吸收液的錐形瓶內，然后向消煮管中加入50mL氫氧化鈉溶液（4.3）進行蒸餾。蒸 餾時間以吸收液體積達到100mL時為宜。降下錐形瓶，用蒸餾水沖洗冷凝管末端，洗液均需流入錐形瓶內。

7.2.3 滴定

　　用0.1mol／L的標準鹽酸溶液（4.6.1）滴定吸收液，溶液由藍綠色變成灰紅色為終點。

8 空白測定

　　稱取蔗糖0.5g，代替試樣，按第7章進行空白測定，消耗0.1mol／L鹽酸標準溶液（4.6.1）的體積不得超過0.2mL。消耗0.02mol／L鹽酸標準溶液（4.6.2）體積不得超過0.3mL。

9 分析結果的表述

9.1 計算見下式：

9.2 重復性

　　每個試樣取兩個平行樣進行測定，以其算術平均值為結果。

　　當粗蛋白質含量在25％以上時，允許相對偏差為1％。

　　當粗蛋白含量在10％～25％之間時，允許相對偏差為2％。

　　當粗蛋白質含量在10％以下時，允許相對偏差為3％。